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发布时间:2025/9/28 14:53:28 阅读次数:21
货号:JWSH1111 规格:50管/48样
谷胱甘肽还原酶(glutathione reductase, GR)活性测定试剂盒说明书
紫外分光光度法
产品内容:
试剂一:液体×1 瓶,4℃保存。
试剂二:粉剂×1 瓶,4℃保存。临用前加入 5.0 mL 蒸馏水,混匀。
试剂三:液体×1 支,4℃保存。
产品说明:
GR是广泛存在于真核和原核生物中的一种黄素蛋白氧化还原酶,是谷胱甘肽氧化还原循环的关键酶之一(通常昆虫中GR 被 TrxR 取代)。GR 催化NADPH 还原 GSSG 生成 GSH,有助于维持体内GSH/GSSG比值。GR 在氧化胁迫反应中对活性氧清除起关键作用,此外 GR还参与抗坏血酸-谷胱甘肽循环途径。
GR能催化NADPH还原GSSG再生GSH,同时不断消耗NADPH生成NADP+;NADPH在340nm有特征吸收峰,相反NADP+在该波长无吸收峰;通过测定340nm吸光度下降速率;来测定NADPH脱氢速率,从而计算GR活性。
自备仪器和用品:
紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、移液器、1mL石英比色皿和蒸馏水。
操作步骤:
一、粗酶液提取
1.组织:按照组织质量(g):试剂一体积(ml)1:5-10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1ml试剂一进行冰浴匀浆。10000rpm,4℃离心10min,取上清置冰上待测。
2.细菌、真菌:按照细胞数量(104个):试剂一体积(ml)为500-1000:1的比例(建议500万细胞加入1ml试剂一),冰浴超声超声破碎细胞(功率300w,超声3s,间隔7s,总时间3min);然后10000rpm,4℃,离心10min,取上清置于冰上待测。
二、GR 测定操作:
1.分光光计预热 30 min 以上,调节波长到 340 nm,蒸馏水调零。
2.试剂一置于 25℃(普通物质)或者37℃(哺乳动物)中预热30min以上。
3.空白管:取1mL 石英比色皿,加入850µL 试剂一,100µL 试剂二,50µL 试剂三,充分混匀,于340nm 处测定10 s和190 s 吸光度,记为 A空1和A空2,△A空白管= A 空1﹣A 空2。
4.测定管:取1mL 石英比色皿,加入750µL 试剂一,100µL 试剂二, 100µL 上清液,50µL 试剂三,充分混匀,于340nm 处测定 10 s 和 190 s 吸光度,记为 A 测1 和 A 测2,△A 测定管= A测1﹣A测2。
注意:空白管只需要测定一次。
三、GR 活性计算:
(1)按蛋白浓度计算
活性单位定义:在一定温度中, pH8.0 条件下,每 毫克蛋白每分钟催化 1µmol NADPH 氧化。GR 酶活(U/mg prot)= [ (△A 测定管-△A 空白管)÷ε÷d×V 反总×106] ÷(Cpr×V样)÷T
=0.536×(△A 测定管-△A 空白管)÷Cpr
(2)按样本质量计算
活性单位定义:在一定温度中, pH8.0 条件下,每克样本每分钟催化 1µmol NADPH 氧化。
GR 酶活(U/g)= [ (△A 测定管-△A 空白管)÷ε÷d×V 反总×106] ÷(W×V样÷V 样总)÷T
=0.536×(△A 测定管-△A 空白管)÷W
(3)按细胞数量计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每 104个细胞每分钟催化 1µmol NADPH 氧化。
GR 酶活(U/104 cell)= [ (△A 测定管-△A 空白管)÷ε÷d×V 反总×106] ÷(细胞数量×V样÷V 样总)÷T=0.536×(△A 测定管-△A 空白管)÷细胞数量
ε:NADPH 摩尔消光系数 6.22×103L/mol/cm;V 反总:反应体系总体,1000µL=0.001 L;106:1 mol=1×106µmol;Cpr:上清液蛋白浓度( mg/mL);V 样:加入反应体系中上清液体积,100µL =0.1 mL;V样总:加入提取液体积ˈ 1mL;W,样本质量,g;T:反应时间,3 min。
注意事项:
1.样品处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力,匀浆液避免反复冻融;
2.试剂二须现配现用,配置完后,置于冰上;
3.测定前须先用 1~2 个样做预实验,确保180s 内吸光值变化呈线性,哺乳动物组织一般须用试剂一稀释 2~5 倍;
4.细胞中GR 活性测定时,细胞数目须在 300 万-500 万之间,细胞中 GR 的提取时可加试剂一后研磨或超声波处理,不能用细胞裂解液处理细胞。
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