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发布时间:2026/8/31 10:55:28 阅读次数:27
蛋白巯基化(S-thiolation)高效液相色谱 (HPLC)分析试剂盒产品说明书
主要用途
蛋白巯基化(S-thiolation)高效液相色谱 (HPLC)分析试剂是一种旨在通过稳定或还原预处理和衍生化反应,进而在高效液相色谱仪和可见光谱下(412nm波长)检测分析,分离出巯基化蛋白波峰,以定量测定样品中蛋白质巯基化水平的权威而经典的技术方法。该技术经过精心研制、成功实验证明的。其适用于人体、动物等细胞、组织、血液(血浆、血清)等样品中蛋白巯基化的检测。可用于氧化应激反应等研究。产品严格无菌,即到即用,操作简捷,性能稳定。
技术背景
蛋白巯基化(S-thiolation)是转译后蛋白质修饰(modification)的一种方法,通过部分氧化的蛋白质巯基(sulfhydryls)与硫醇(thiols),例如半胱氨酸或谷胱苷肽,的反应,或者通过谷胱苷肽的二硫键氧化形式中二硫化物-硫醇的置换反应,从而实现修饰,调节蛋白质功能,其间无需酶的作用,但受到细胞内氧化还原状态的调度。蛋白巯基化是巯基氧化产生许多低分子量硫醇(low molecular weight thiols),其作用于抗氧化机制,防止半胱氨酸残基不可逆氧化成高度氧化状态。在防御氧化应激条件下,蛋白巯基化通过直接还原实现可逆反应。已经确认的应对氧化应激产生蛋白质巯基化的蛋白,包括碳酸酐酶(carbonic anhydrase III)、肌动蛋白(actin)、肌酸激酶(creatine kinase)、糖原磷酸化酶b 、(glycogen phosphorylase b)、苷油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase;GAPDH)等。蛋白巯基化可以作为机体氧化应激反应或氧化损伤程度的生物指数:血浆蛋白质巯基化指数(protein thiolation index)。谷胱苷肽是主要硫醇分子种类之一。蛋白巯基化也可视作为谷胱苷肽化(glutathionylation)。Ellman引入5,5-二硫基-双(2-硝基苯甲酸)[5,5’-dithiobis-(2-nitrobenzoic acid);DTNB],与巯基的特异性结合反应,产生混合巯基和黄色的5-巯基-2-硝基苯甲酸(5-thio-2-nitrobenzoic acid;TNB),用于分析蛋白质巯基化水平。基于DTNB的特性,通过样品N-乙基马来酰亚胺(N-Ethylmaleimide;NEM)或二硫苏糖醇(Dithiothreitol;DTT)预处理后,与DTNB反应,进而在高效液相色谱仪和光度仪下(412nm波长)检测分析,分离出巯基化蛋白,以定量分析蛋白巯基化的水平。
产品内容
裂解液(Reagent A) 毫升
稳定液(Reagent B) 毫升
还原液(Reagent C) 毫升
标记液(Reagent D) 毫升
流相液A(Reagent E) 毫升
流相液B(Reagent F) 毫升
标准液(Reagent G) 微升
产品说明书 1份
保存方式
保存裂解液(Reagent A)、还原液(Reagent C)、标记液(Reagent D)和标准液(Reagent G)在-20℃冰箱里,其余的保存在4℃冰箱里,标准液(Reagent G)避免光照;流相液B(Reagent F)具有挥发性,注意密闭瓶盖;有效保证3月
用户自备
1.5毫升离心管:用于样品操作的容器
1.5毫升锥形离心管:用于样品操作的容器
DOUNCE匀浆器:用于裂解组织细胞
超声仪:用于裂解组织细胞
(微型)台式离心机:用于样品处理
恒温水槽:用于反应孵育
高效液相色谱仪(HPLC):用于定量测定
实验步骤
一、 样品准备
1) 血浆样品准备
1. 准备好EDTA抗凝管
2. 抽取1毫升血液,置于抗凝管里
3. 放进4℃微型台式离心机离心10分钟,速度为700g(或3000RPM,例如eppendorf 5415)
4. 小心移取上层黄色液体到新的1.5毫升离心管――此为血浆成分(注意:避免触碰白色液体层)
5. (选择步骤)即刻置于冰槽里备用或放进-70℃冰箱里保存
6. 分别移取250微升血浆到2个1.5毫升离心管,并标记为稳定处理管和还原处理管
7. 加入xx微升稳定液(Reagent B)到稳定处理管,混匀
8. 加入xx微升还原液(Reagent C)到还原处理管,混匀
9. 放进37℃恒温水槽孵育20分钟
10. 置于冰槽里
11. 即刻进行后续高效液相色谱分析
2) 血清样品准备
1. 准备好不含抗凝剂的储存管
2. 抽取1毫升血液,置于储存管里
3. 室温下,静置30分钟,直至血液凝结
4. 放进4℃微型台式离心机离心15分钟,速度为2000g(或5000RPM,例如eppendorf 5415)
5. 小心移取上层黄色液体到新的1.5毫升离心管――此为血清成分(注意:避免触碰白色液体层)
6. 分别移取250微升血清到2个1.5毫升离心管,并标记为稳定处理管和还原处理管
7. 加入xx微升稳定液(Reagent B)到稳定处理管,混匀
8. 加入xx微升还原液(Reagent C)到还原处理管,混匀
9. 放进37℃恒温水槽孵育20分钟
10. 置于冰槽里
11. 即刻进行后续高效液相色谱分析
3) 细胞样品准备
1. 准备好75cm2细胞培养瓶或100mm细胞培养皿的待测培养细胞(1至5 X 107细胞)
2. 小心加入xx毫升用户自备的磷酸缓冲液,覆盖生长表面
3. 小心抽去磷酸缓冲液
4. 使用细胞刮脱棒轻柔刮脱细胞(注意:可以使用胰酶消化)
5. 加入3毫升用户自备的磷酸缓冲液,混匀细胞
6. 移入到预冷的15毫升锥形离心管(注意:悬浮细胞从这一步骤开始)
7. 放进4℃台式离心机离心5分钟,速度为300g
8. 小心抽去上清液
9. 加入xx微升裂解液(Reagent A),充分混匀
10. 转移到预冷的1.5毫升离心管
11. 超声仪处理:100瓦功率,3秒一次,冰上间隙1分钟,重复3至5次
12. 放进4℃微型台式离心机离心10分钟,速度为10000g
13. 分别移取250微升上清液到2个1.5毫升离心管,并标记为稳定处理管和还原处理管
14. 加入xx微升稳定液(Reagent B)到稳定处理管,混匀
15. 加入xx微升还原液(Reagent C)到还原处理管,混匀
16. 放进37℃恒温水槽孵育20分钟
17. 置于冰槽里
18. 即刻进行后续高效液相色谱分析
4) 组织样品准备
1. 手术取出动物组织,并秤重以确定20至100毫克组织重量
2. 移入到一个液氮冻存管
3. 即刻放进液氮罐过夜
4. 次日从液氮罐里取出,即刻(最快速度)用研磨棒碾碎组织成粉末状(注意:切莫使组织冻融)
5. 放进一个1.5毫升离心管
6. 加入预冷的xx微升裂解液(Reagent A)
7. 强力涡旋震荡30秒,充分混匀
8. 超声仪处理:100瓦功率,3秒一次,冰上间隙1分钟,重复3至5次
9. 放进4℃微型台式离心机离心10分钟,速度为10000g
10. 分别移取250微升上清液到2个1.5毫升离心管,并标记为稳定处理管和还原处理管
11. 加入xx微升稳定液(Reagent B)到稳定处理管,混匀
12. 加入xx微升还原液(Reagent C)到还原处理管,混匀
13. 放进37℃恒温水槽孵育20分钟
14. 置于冰槽里
15. 即刻进行后续高效液相色谱分析
二、 测定准备
1. 开启仪器预热15分钟
2. 根据下表设置高效液相色谱仪(HPLC)参数
| 参数 | 推荐 | 补充说明 |
| 色谱柱 | 长度:25cm 直径:4.6mm | Waters仪器或 Agilent仪器 |
| 固定相 | ODS |
|
| 流动相 | 流相液A(Reagent E)和流相液B(Reagent F) | |
| 流速 | 1毫升/分钟 |
|
| 注射容量 | 50微升 | 10微升至100微升 |
| 检测 | 可见光 |
|
| 波长 | 412nm |
|
| 柱温 | 30℃ |
|
| 峰值时间(retention) | 3.7分钟 | 巯基化蛋白 |
| 运行时间 | 30分钟 | 参考 |
3. 运行程序
| 运行时段 | 程序 | 时间 |
| 开机后预运行 | 100% 流相液A(Reagent E) 0%流相液B(Reagent F) | 总10分钟 |
| 检测运行时段 | 100% 流相液A(Reagent E)至0% 流相液A(Reagent E) 0%流相液B(Reagent F)至100% 流相液B(Reagent F) | 0至15分钟 |
| 关机前运行 | 0% 流相液A(Reagent E)至100% 流相液A(Reagent E) 100%流相液B(Reagent F)至100% 流相液B(Reagent F) | 总3分钟 |
4. 使用流相液A(Reagent E)运行1次(30毫升),以达到色谱柱均衡和温度稳定
三、 标准样品配制
1. 准备好5个1.5毫升离心管,标记为1至5号管
2. 分别加入xx微升流相液A(Reagent E)到1至5号管
3. 移取xx微升标准液(Reagent G)到1号管,混匀
4. 小心移取xx微升1号管稀释的标准液(Reagent G)到2号管,混匀
5. 小心移取xx微升2号管稀释的标准液(Reagent G)到3号管,混匀
6. 小心移取xx微升3号管稀释的标准液(Reagent G)到4号管,混匀
7. 将1至5号管放进冰槽里备用,避免光照;标准管浓度见下表
| 管号 | 流相液A(Reagent E) | 标准液(Reagent G) | 标准谷胱苷肽浓度 |
| 1 | xx微升 | xx微升 | xx微摩尔/升 |
| 2 | xx微升 | xx微升1号管 | xx微摩尔/升 |
| 3 | xx微升 | xx微升2号管 | xx微摩尔/升 |
| 4 | xx微升 | xx微升3号管 | xx微摩尔/升 |
| 5 | xx微升 | 0 | 0 |
四、色谱分析
1. 分别移取xx微升上述配制的标准液(Reagent G)或待测样品(稳定处理和还原处理)到1.5毫升离心管里
2. 分别加入xx微升标记液(Reagent D),混匀
3. 室温下孵育15分钟
4. 置于冰槽里,准备注射
5. 每次(每个样品)注射100微升
6. 每次(每个样品)运行30分钟
7. 获得色谱波峰图:波峰面积(peak area)或峰值,保存记录
8. 全部运行完成,使用适量的流相液A(Reagent E)清洗色谱柱
五、计算蛋白质巯基化水平
1. 方法一:通过仪器中的软件进行测算
2. 方法二:构建标准曲线:纵座标(Y轴)为波峰面积(peak area);横座标(X轴)为标准谷胱苷肽浓度(微摩尔/升),根据标准曲线获得样品对应谷胱苷肽浓度(微摩尔/升)
3. 方法三:公式计算(选择单一浓度的标准液)
样本谷胱苷肽浓度(微摩尔/升)=【样本波峰面积(peak area)X标准谷胱苷肽浓度(微摩尔/升)】÷对应标准谷胱苷肽浓度的波峰面积
蛋白质巯基化水平(谷胱苷肽微摩尔/升)=稳定处理管样品硝基化(谷胱苷肽)浓度(微摩尔/升)—还原处理管样品硝基化(谷胱苷肽)浓度
转换:蛋白质巯基化水平(谷胱苷肽纳摩尔/毫升)÷样品蛋白浓度(毫克/毫升)=蛋白质巯基化水平(谷胱苷肽纳摩尔/毫克)
注意事项
1. 本产品为20次操作
2. 本产品可以用于各种特定蛋白的巯基化检测
3. 用户可以使用过氧化氢、甲萘醌、二酰胺、三丁基过氧化氢等诱导蛋白质硫基化
4. 本产品检测范围是1至100微摩尔/升
5. 操作时,须戴手套
6. 流相液B(Reagent F)具有挥发性,注意密闭瓶盖或使用封口膜
7. 色谱柱的异物残留、气泡产生、温度未达均衡等将导致异常波峰、时间偏移等
8. 用户可以使用已知浓度的标准液(Reagent G)作为内参标准加入到样品中,检测回收率(recovery)
9. 蛋白巯基化的HPLC参考图谱如下
10. 巯基化蛋白衍生物的出峰时间(retention)以用户操作时,使用的标准液(Reagent G)实际出峰为准
11. 本公司提供系列蛋白巯基化检测试剂产品
质量标准
1. 本产品经鉴定性能稳定
2. 本产品经鉴定检测敏感
使用承诺
上海极威生物科技有限公司秉着“信誉至上、客户满意、质量承诺”的宗旨为我们的用户提供优质产品和服务。用户收到货后,应按照产品说明书上的规定妥善保管并在有效期内使用。我们的产品在销售前已作严格的质量鉴定,保证说明书所述的使用效果。在货到后10天内若发现确属本产品的质量问题,请立即以书面形式(实验报告)与本公司联系,并将该产品退回,经检验确系产品质量所致,本公司负责更换产品。如系使用者错误操作所致,本公司不承担由此造成的损失。
友情提醒
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订购信息
单组份订购信息
编号 名称 规格
G&VS10368.1 蛋白巯基化高效液相色谱 (HPLC)分析试剂盒 20次
G&VS10368.1A 裂解液(Reagent A) 毫升
G&VS10368.1B 稳定液(Reagent B) 毫升
G&VS10368.1C 还原液(Reagent C) 毫升
G&VS10368.1D 标记液(Reagent D) 毫升
G&VS10368.1E 流相液A(Reagent E) 毫升
G&VS10368.1F 流相液B(Reagent F) 毫升
G&VS10368.1G 标准液(Reagent G) 毫升
试剂盒订购信息
| 产品编号 | 名称 | 规格 |
| G&VS10368.1 | 蛋白巯基化(S-thiolation)高效液相色谱 (HPLC)分析试剂盒 | 20次 |
| G&VS10368.2 | 蛋白巯基化(S-thiolation)同位素法分析试剂盒 | 20次 |
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