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藻类类囊体(thylakoid)粗提分离试剂盒产品说明书

发布时间:2026/10/15 17:18:27      阅读次数:14

 

藻类类囊体(thylakoid)粗提分离试剂盒产品说明书

 

主要用途

藻类类囊体(thylakoid)粗提分离试剂是一种旨在通过物理破壁、化学破膜,以及差速离心处理方法,从藻类细胞中分离出完整的类囊体细胞器的权威而经典的技术方法。该技术经过精心研制、成功实验证明的。适合于各种藻类细胞类囊体的预制备。产品即到即用,操作简易,性能稳定,无蛋白酶污染,萃取纯度和产量皆高。 

 

技术背景

类囊体(thylakoid)是蓝藻、植物叶绿体和蓝细菌(cyanobacteria)内特定的膜结构(疏水性膜整合蛋白和亲水性膜相关蛋白),一种与真核细菌相同特征的脂质双层(lipid bilayer),但类囊体膜含有丰富的糖脂(glycolipids)。类囊体内含有大量的蛋白质及其复合物,主要参与光依赖性光合成反应,以及蛋白质目标、处理、折叠、氧化应激反应和转译作用。其中整合膜蛋白光系统I复合物(photosystem I complex;PSI)和II复合物(PSII),作用于光采集和光化学能转换,形成光电子传递链,最终产生ATP。类囊体的分离,用于光系统的内容物、装配、寡聚体状态的研究,分析光合成机制,了解其赋予作物生长和生产的意义。通过机械或化学方法破裂细胞,进而差速离心获得叶绿体,然后通过渗透压休克处理获得完整类囊体内活性蛋白成分,最后进行相关蛋白的独立分析。  

 

产品内容

清理液(Reagent A)   毫升

裂解液(Reagent B)   毫升

净化液(Reagent C)   毫升

强化液(Reagent D)   毫升

保存液(Reagent E)   毫升

破膜液(Reagent F)   毫升

产品说明书        1份

 

保存方式

保存裂解液(Reagent B)、净化液(Reagent C)和破膜液(Reagent F)在-20℃冰箱里,其余的保存在4℃冰箱里;有效保证6月

 

用户自备

15毫升锥形离心管:用于样品操作的容器

50毫升锥形离心管:用于样品操作的容器

2毫升离心管:用于样品操作的容器

1.5毫升离心管:用于样品操作的容器

20微米尼龙网:用于去除植物裂解残渣

小型漏斗:用于过滤的装置

4℃(微型)台式离心机:用于样品操作

FRENCH PRESS:用于裂解细胞

超声仪:用于裂解细胞

DOUNCE匀浆器:用于裂解细胞

涡旋震荡仪:用于混匀

 

实验步骤

实验开始前,将试剂盒里的净化液(Reagent C)冻融,然后移出xx毫升净化液(Reagent C)和xx毫升的裂解液(Reagent B)到15毫升锥形离心管里,混匀后,标记为裂解工作液,置入冰槽里备用。然后进行下列操作。

1. 准备好新鲜的藻类细胞(暗室中静置16小时),并秤重以确定1克湿重重量 

2. (选择步骤)放进预冷的50毫升锥形离心管

3. (选择步骤)加入xx毫升清理液(Reagent A)清洗1次

4. 加入预冷的xx毫升裂解工作液

5. 涡旋震荡5秒,充分混匀

6. 即刻放进预冷的FRENCH PRESS仪器,1000PSI,30分钟

7. 或使用超声仪:100瓦功率,1分钟一次,置于冰槽里间隔2分钟,重复15至30次

8. 或使用DOUNCE匀浆器。置于冰槽里用匀浆棒匀化细胞块(约80下)(注意:参见注意事项9)

9. 准备1个小型漏斗,内衬2个20微米尼龙网,置于50毫升锥形离心管上或真空抽滤管上

10. (选择步骤)将所有组织匀浆液移入到小型漏斗里过滤(注意:可以使用4层纱布替代)

11. 放进4℃台式离心机离心5分钟,速度为200g

12. 小心移出上清液(注意:不要触碰沉淀物)到另一个新的预冷的15毫升锥形离心管(如果跳过过滤步骤或上清液含有肉眼可见的残渣,重复离心5分钟一次,速度为200g)——此步骤去除细胞壁残渣、细胞核和未溶解的细胞 

13. 放进4℃台式离心机离心10分钟,速度为1000g

14. 小心抽去上清液,保留绿色沉淀颗粒,避免光照——此步骤获得叶绿体沉淀物 

15.  加入预冷的xx毫升强化液(Reagent D)混匀沉淀颗粒

16.  放进4℃台式离心机离心5分钟,速度为5000g

17.  小心抽去上清液

18. (选择步骤)加入xx至xx微升保存液(Reagent E),混匀颗粒群

19. (选择步骤)转移到1.5毫升离心管

20. (选择步骤)放进4℃微型台式离心机离心5分钟,速度为5000g

21. (选择步骤)小心抽去上清液

22. 加入xx至xx微升保存液(Reagent E),混匀颗粒群

23. 保存在-70℃冰箱里

24. 或继续进行下列操作:

 

操作一、类囊体总蛋白定量检测

1) 移取10微升进行蛋白定量检测(注意:建议使用植物叶绿体总蛋白定量检测试剂盒-G&VS16009)

2) (选择步骤)进行叶绿素定量测定(建议使用纯化叶绿体叶绿素(chlorophyll)含量光度法定量检测试剂盒-G&VS16061.1):1毫克/毫升叶绿素=10毫克/毫升总蛋白

 

操作二、可溶性类囊体蛋白电泳

1) 加入xx微升破膜液(Reagent F)(注意:50微克叶绿素蛋白)

2) 涡旋震荡15秒,混匀颗粒群

3) 放进冰槽里孵育20分钟,避免光照

4) 放进微型台式离心机离心30分钟,速度为15000g

5) 小心移取上清液到新的1.5毫升离心管

6) 若暂时不予后续处理,保存在-20℃冰箱里

7) 移取20微升(含有5微克叶绿素)上清液到新的1.5毫升离心管

8) 加入20微升用户自备的上样液

9) 涡旋震荡15秒

10) 放进微型台式离心机离心10秒,速度为500g(或2000RPM,例如eppendorf 5415)

11) (选择步骤)煮沸5分钟(根据变性或非变性电泳,予以选择)

12) 上样,进行电泳操作(15毫安)和西方杂交

 

注意事项

1. 本产品为20次操作(1克湿重藻类细胞/次) 

2. 建议使用新鲜样品,暗室4℃冰箱里过夜

3. 样品务必避光,以防止淀粉聚集

4. 操作均须在4℃或以下状态下进行

5. 操作时,须无菌操作,避免污染母液,尤其是裂解液(Reagent B)和保存液(Reagent E)

6. 建议使用足够的细胞量

7. 通常匀化次数为80下(或细胞颗粒块状消失为止)达到80%的细胞裂解为理想状态,但不同的细胞类型会存在差异。用户可以通过显微镜观察3微升匀浆物的组织细胞裂解程度:完整细胞呈现发亮的圆环。低于50%可以增加匀化次数

8. 通常1克湿重细胞可以获得100微克类囊体蛋白,约500个以上蛋白

9. 类囊体蛋白须放在-70℃冰箱里储存备用,避免反复冻融

10. 本公司提供系列植物类囊体分析技术产品

11. 

 

质量标准

1. 本产品经鉴定性能稳定

2. 本产品经鉴定无蛋白酶污染

3. 本产品经鉴定萃取产量和纯化程度高

 

使用承诺

上海极威生物科技有限公司秉着“信誉至上、客户满意、质量承诺”的宗旨为我们的用户提供优质产品和服务。用户收到货后,应按照产品说明书上的规定妥善保管并在有效期内使用。我们的产品在销售前已作严格的质量鉴定,保证说明书所述的使用效果。在货到后10天内若发现确属本产品的质量问题,请立即以书面形式(实验报告)与本公司联系,并将该产品退回,经检验确系产品质量所致,本公司负责更换产品。如系使用者错误操作所致,本公司不承担由此造成的损失。

 

友情提醒

IF IT DOESN’T WORK, RECHECK YOUR EXPERIMENT TO SEE WHAT YOU DID WRONG。

 

订购信息

单组分订购信息

编号              名称                 规格

G&VS16081.1     藻类类囊体(thylakoid)粗提分离试剂盒     20次

G&VS16081.1A    清理液(Reagent A)             毫升

G&VS16081.1B    裂解液(Reagent B)             毫升

G&VS16081.1C    净化液(Reagent C)             毫升

G&VS16081.1D    强化液(Reagent D)              毫升

G&VS16081.1E    保存液(Reagent E)              毫升

G&VS16081.1F    破膜液(Reagent F)              毫升

 

试剂盒订购信息

产品编号

名称

规格

G&VS16080.1

植物类囊体(thylakoid)粗提分离试剂盒

20次

G&VS16080.2

植物活性类囊体(thylakoid)分离试剂盒

20次

G&VS16080.3

植物高质纯化类囊体(thylakoid)分离试剂盒

10次

G&VS16081.1

藻类类囊体(thylakoid)粗提分离试剂盒

20次

G&VS16081.2

藻类活性类囊体(thylakoid)分离试剂盒

20次

G&VS16081.3

藻类高质纯化类囊体(thylakoid)分离试剂盒

10次

 


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