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发布时间：2025/3/10 10:14:07 阅读次数：95
柠檬酸合酶（citrate synthase，CS）试剂盒说明书
分光光度法
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
CS（EC 2.3.3.1）广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体基质中，是三羧酸循环第一个限速酶，是三羧酸循环主要调控位点之一。
测定原理：
CS 催化乙酰 CoA 和草酰乙酸产生柠檬酰辅酶 A，进一步水解产生柠檬酸；该反应促使无色的 DTNB 转变成黄色 TNB，在 412nm 处有特征吸光值。
需自备的仪器和用品：
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰、无
水乙醇和蒸馏水
试剂组成和配制：
试剂一：液体 10mL×1 瓶，-20℃保存；
试剂二：液体 2mL×1 瓶，-20℃保存；
试剂三：液体 0.2mL×1 支，-20℃保存；
试剂四：液体 10mL×1 瓶，4℃保存；
试剂五：粉剂×1 支，4℃保存，临用前加入320μL无水乙醇，用不完的试剂4℃保存一周；
试剂六：粉剂×1 支，-20℃保存，临用前加入320μL蒸馏水，用不完的试剂仍-20℃保存；
试剂七：粉剂×1 支，-20℃保存，临用前加入320μL蒸馏水，用不完的试剂仍-20℃保存；
样本的前处理：
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：
① 称取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞，加入 1mL 试剂一和 10uL 试剂三，用冰浴匀浆器
或研钵匀浆。
② 将匀浆 600g，4℃离心 5min。
③ 弃沉淀，将上清液移至另一离心管中，11000g，4℃离心 10min。
④ 上清液即胞浆提取物，可用于测定从线粒体泄漏的 CS（此步可选做）。
⑤ 在步骤④中的沉淀中加入 200uL 试剂二和 2uL 试剂三，超声波破碎（冰浴，功率 20％
或 200W，超声 3 秒，间隔 10 秒，重复 30 次），用于线粒体 CS 测定。
测定步骤：
1、分光光度计预热 30min 以上，调节波长至 412nm，蒸馏水调零。
2、将试剂四、五、六和七在 37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）孵育 5min。
3、样本测定
| 试剂名称（μL） | 测定管 |
| 试剂四 | 780 |
| 试剂五 | 30 |
| 试剂六 | 30 |
| 样本 | 30 |
| 试剂七 | 30 |
将上述试剂按顺序加入 1 mL 玻璃比色皿中，加试剂七的同时开始计时，在 412nm 波长下记
录 20 秒时的初始吸光度 A1 和反应 2min 后的吸光值 A2，计算 ΔA=A2-A1。
CS 活性计算：
（1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。
CS（nmol/min /mg prot）＝[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109 ]÷(V 样×Cpr) ÷T
=1100×ΔA÷Cpr
此法需要自行测定样本蛋白质浓度。
（2）按样本鲜重计算：
单位的定义：每 g 组织每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。
CS（nmol/min /g 鲜重）=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109 ]÷（W× V 样÷V 样总）÷T
=222.2×ΔA÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一个酶活力单位。
CS（nmol/min /104 cell）=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷（500×V 样÷V 样总）÷T
=0.4444×ΔA
V 反总：反应体系总体积，9×10-4 L；ε：TNB 摩尔消光系数，1.36×104 L/mol /cm；d：比
色皿光径，1cm；V 样：加入样本体积，0.03 mL；V 样总：加入提取液体积，0.202 mL；T：
反应时间，2 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细胞或细菌总
数，500 万。
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